Về khối lượng khối mô trong kính hiển vi sinh học
Kính hiển vi sinh học có đèn chiếu có thể di chuyển đèn chiếu lên xuống để đạt được độ sáng vừa phải và khẩu độ của khẩu độ thay đổi cũng có thể được thay đổi để đạt được độ sáng vừa phải. Nếu ánh sáng đến từ mặt trời, đèn chiếu có thể được nâng lên một cách thích hợp và khẩu độ của ánh sáng thay đổi có thể được mở rộng một cách thích hợp. Nếu ánh sáng quá mạnh, đèn chiếu có thể được hạ xuống một cách thích hợp và khẩu độ của giao lộ có thể được giảm một cách thích hợp. Nếu bạn vẫn cảm thấy chói mắt trong tình huống này, bạn có thể chọn đặt bộ lọc thích hợp trên giá đỡ dưới đèn pha. Cây sồi này có thể đạt được độ sáng làm bạn hài lòng. Tất nhiên, việc điều chỉnh vị trí trên và dưới của đèn chiếu có thể thay đổi kích thước khẩu độ của chỉ số ánh sáng và chọn bộ lọc phù hợp, việc này đòi hỏi một thời gian thực hành và kinh nghiệm nhất định.
Một vấn đề rất quan trọng trong kính hiển vi sinh học là quá trình lấy mẫu và phân lập tế bào. Sau khi đông lạnh-sấy khô và nhúng nhựa (FD), các phần siêu mỏng- đông lạnh phải được xử lý cẩn thận để đảm bảo rằng hàm lượng 65 phần tử trong mỗi phần không bị hỏng trong quá trình quan sát và phân tích. Do có nhiều bước và chi phí cao liên quan đến phân tích vi mô tia X, thật đáng tiếc khi đưa ra kết luận sai nếu các tế bào được phân tích bị hỏng hoặc chết sau quá trình xử lý kéo dài và nhiều{6}}bước. Các tế bào cơ tim được phân tách bằng phương pháp xử lý gelatinase có hai dạng, một dạng hình que dài{8}}và dạng kia có hình tròn. Cái sau đề cập đến các tế bào sắp chết bị hư hỏng trong quá trình tách tế bào.
Hàm lượng và sự phân bố chất điện giải ở hai loại tế bào này rất khác nhau dưới kính hiển vi sinh học. Na rất cao và K cực kỳ thấp trong tế bào cơ tim tròn và nồng độ Ca trong sợi nhánh tuyến tính rất cao. Sau khi xác minh bằng các phương pháp phân tích khác, người ta đã chứng minh rằng Na cao và K thấp trong tế bào tròn và Ca cao trong ty thể là kết quả của tổn thương màng trong quá trình tách tế bào. Phương pháp cố định lạnh cho tế bào và mô thường bao gồm việc làm nguội trước tiên và sau đó bảo quản chúng trong nitơ lỏng. Cố định dập tắt là rất quan trọng cho hiệu quả bảo quản. Tế bào sống hoặc mô tươi rất giàu nước, khi bị làm nguội, các phần tế bào hoặc mô tiếp xúc trực tiếp với chất làm lạnh (đặc biệt khi sử dụng nitơ lỏng để làm mát) thường bị đông lạnh và cố định trước, tạo thành một “lớp vỏ” cản trở phần trung tâm của tế bào bị nghiền nát và cố định. Do đó, khi tiến hành phân tích vi mô tia X, người ta thường thấy rằng các tinh thể băng tồn tại ở phần trung tâm của các tế bào lớn hơn. Để ngăn chặn tình trạng này xảy ra, một chất có nhiệt độ nóng chảy cao hơn nitơ lỏng nhưng thấp hơn 806c được sử dụng làm chất làm lạnh. Có rất nhiều chất trong số này, nhưng chúng rất dễ thu được và giá cả phải chăng nhất là propan đậm đặc (nhiệt độ sôi 42,120c, điểm nóng chảy 187,10c, trọng lượng phân tử 44,1), cũng có tốc độ làm lạnh nhanh. Nhưng nhược điểm của nó là dễ cháy.
