Giới thiệu về thể tích khối mô trong kính hiển vi sinh học
Một kính hiển vi sinh học với đèn chiếu sáng có thể di chuyển ánh sáng lên xuống để đạt được độ sáng vừa phải, và khẩu độ của khẩu độ biến cũng có thể được thay đổi để đạt được độ sáng vừa phải. Nếu ánh sáng từ mặt trời, đèn chiếu sáng có thể được nâng lên một cách thích hợp và khẩu độ của ánh sáng biến có thể được mở rộng một cách thích hợp. Nếu ánh sáng quá mạnh, đèn chiếu sáng có thể được hạ xuống một cách thích hợp và khẩu độ của giao điểm có thể được giảm một cách thích hợp. Nếu bạn vẫn cảm thấy rực rỡ trong tình huống này, bạn có thể chọn đặt một bộ lọc thích hợp trên khung dưới ánh đèn sân khấu. Cây sồi này có thể đạt được một độ sáng thỏa mãn bạn. Tất nhiên, việc điều chỉnh các vị trí trên và dưới của đèn chiếu có thể thay đổi kích thước khẩu độ của việc đọc ánh sáng và chọn các bộ lọc phù hợp, đòi hỏi một thời gian thực hành và kinh nghiệm nhất định.
Một vấn đề rất quan trọng trong kính hiển vi sinh học là quá trình lấy mẫu và phân lập các tế bào. Sau khi đông khô và nhúng nhựa (FD), các phần cực mỏng phải được xử lý cẩn thận để đảm bảo rằng hàm lượng phần tử 65 của mỗi bộ phận không bị hỏng trong quá trình quan sát và phân tích. Do nhiều bước và chi phí cao liên quan đến phân tích vi khuẩn tia X, thật đáng tiếc khi đưa ra kết luận không chính xác nếu các tế bào được phân tích bị hỏng hoặc chết sau khi xử lý kéo dài và nhiều bước. Các tế bào cơ tim được phân tách bằng cách điều trị bằng gelatinase có hai dạng, một hình dạng dài và hình kia là hình tròn. Cái sau đề cập đến các tế bào sắp chết bị hư hại trong quá trình tách tế bào.
Hàm lượng và phân phối chất điện giải trong hai loại tế bào này rất khác nhau dưới kính hiển vi sinh học. NA rất cao và K cực kỳ thấp trong các tế bào cơ tim tròn và nồng độ Ca trong đuôi gai tuyến tính là rất cao. Sau khi xác minh bằng các phương pháp phân tích khác, người ta đã chứng minh rằng NA và k thấp cao trong các tế bào tròn và Ca cao trong ty thể là kết quả của tổn thương màng trong quá trình tách tế bào. Phương pháp cố định lạnh cho các tế bào và mô thường liên quan đến việc dập tắt đầu tiên và sau đó lưu trữ chúng trong nitơ lỏng. Việc cố định dập tắt là rất quan trọng cho hiệu ứng bảo quản. Các tế bào sống hoặc các mô tươi rất giàu nước, và khi được làm nguội, các phần của các tế bào hoặc mô tiếp xúc trực tiếp với chất làm lạnh (đặc biệt là khi sử dụng nitơ lỏng để làm mát) thường bị đóng băng và cố định trước tiên, tạo thành "vỏ" cản trở phần trung tâm của các tế bào bị nghiền và cố định. Do đó, khi tiến hành phân tích vi phân tia X, người ta thường thấy rằng các tinh thể băng tồn tại ở phần trung tâm của các tế bào lớn hơn. Để ngăn chặn tình huống này xảy ra, một chất có điểm nóng chảy cao hơn nitơ lỏng nhưng thấp hơn 806C được sử dụng làm chất làm lạnh. Có nhiều chất trong số này, nhưng chúng rất dễ lấy và giá cả phải chăng nhất là propan tập trung (điểm sôi 42.120c, điểm nóng chảy 187.10C, trọng lượng phân tử 44.1), cũng có tốc độ làm mát nhanh. Nhưng bất lợi của nó là nó dễ cháy.
