Kính hiển vi sinh học trên thể tích khối mô
Kính hiển vi sinh học có tụ điện có thể di chuyển tụ điện lên xuống để làm cho độ sáng của nó vừa phải, đồng thời cũng có thể thay đổi khẩu độ của máy phân tích ánh sáng thay đổi để đạt được độ sáng vừa phải là 9b. Nếu ánh sáng ở dưới ánh nắng mặt trời, tụ điện có thể được nâng lên một cách thích hợp và khẩu độ của nhiễu quang học có thể thay đổi có thể được mở rộng một cách thích hợp. Nếu ánh sáng quá mạnh, có thể hạ thấp tụ điện một cách thích hợp và giảm khẩu độ của giao lộ một cách thích hợp. Nếu bạn vẫn cảm thấy chói trong trường hợp này, bạn có thể chọn một bộ lọc thích hợp và đặt nó lên giá đỡ dưới tụ quang. Tussah này có thể có được độ sáng làm bạn hài lòng. Tất nhiên, cần phải tích lũy kinh nghiệm sau một thời gian thực hành nhất định trong việc điều chỉnh vị trí trên và dưới của tụ quang để thay đổi kích thước khẩu độ của số đọc quang và chọn bộ lọc phù hợp.
Một vấn đề rất quan trọng của kính hiển vi sinh học là hàm lượng 65 nguyên tố trong mỗi bộ phận sau khi đông khô và nhúng nhựa (FD) và đông khô phải được xử lý cẩn thận để không làm hỏng các tế bào cần quan sát và phân tích. Bởi vì phân tích vi mô bằng tia X không chỉ bao gồm nhiều bước mà còn tốn rất nhiều chi phí nên rất đáng tiếc nếu đưa ra kết luận sai nếu tế bào được phân tích là tế bào bị hư hỏng hoặc tế bào chết sau quá trình điều trị lâu dài và nhiều bước. Ví dụ, các tế bào cơ tim được phân tách bằng phương pháp xử lý collagenase có hai dạng, một dạng hình que dài và dạng kia có dạng tròn. Loại thứ hai là một tế bào sắp chết bị hư hỏng trong quá trình tách tế bào.
Hàm lượng và sự phân bố chất điện giải ở hai loại tế bào này rất khác nhau dưới kính hiển vi sinh học. Na rất cao và K rất thấp trong tế bào cơ tim tròn và nồng độ ca trong sợi nhánh tuyến tính rất cao. So với các phương pháp phân tích khác, người ta đã chứng minh rằng Na cao và K thấp trong tế bào tròn và ca cao trong ty thể là kết quả của tổn thương màng tế bào trong quá trình tách tế bào. Phương pháp cố định lạnh của tế bào và mô thường là cố định chúng bằng cách làm nguội trước, sau đó bảo quản chúng trong nitơ lỏng. Việc cố định dập tắt là rất quan trọng đối với hiệu quả bảo quản. Tế bào sống hoặc mô tươi rất giàu nước. Khi làm nguội, các bộ phận của tế bào hoặc mô tiếp xúc trực tiếp với chất bảo vệ lạnh (đặc biệt là khi làm nguội bằng nitơ lỏng) thường được đông lạnh và cố định trước, do đó tạo thành một "lớp vỏ", cản trở quá trình đóng băng và cố định của trung tâm. một phần của tế bào. Vì vậy, khi thực hiện phân tích vi mô bằng tia X, người ta thường thấy có những tinh thể băng ở trung tâm của các tế bào lớn hơn. Để ngăn điều này xảy ra, một chất có điểm nóng chảy cao hơn nitơ lỏng nhưng nhiệt độ sấy thấp hơn 806c được sử dụng làm chất làm mát. Có nhiều chất như vậy, nhưng chất dễ kiếm nhất là propan đậm đặc (điểm sôi-42．120c, điểm nóng chảy-187．10c, trọng lượng phân tử-44.1), có công thức tốc độ làm mát nhanh nhất. Nhưng nhược điểm của nó là dễ cháy.
Kính hiển vi sinh học có thể đặt sợi cơ lên một khung đặc biệt, khi sợi cơ co lại đến một giai đoạn nhất định và cần được cố định, vòi phun sẽ được khởi động ngay lập tức để propan lỏng được phun lên sợi cơ để làm nguội và cố định. Nó. Sau đó, các sợi cơ được lấy ra cùng với giá và đưa vào nitơ lỏng. Nếu tế bào máu hoặc tế bào tách biệt được cố định, trước tiên hãy ly tâm ở tốc độ thấp để cô đặc tế bào, chuyển tế bào vào ống nhỏ màu bạc có tính dẫn nhiệt tốt và đặt ống nhỏ vào propan lỏng để đông lạnh và cố định. Khi sửa chữa tuyến tụy chuột trong phòng thí nghiệm Hall, hai khối thép được làm lạnh trước bằng helium lỏng (hoặc nitơ lỏng), đồng thời đặt hai khối đồng trước và sau tuyến tụy bằng kìm để các dì được dập tắt và cố định. Mô hoặc tế bào có thể được lưu trữ trong một thời gian dài sau khi được làm nguội và cố định và chuyển sang nitơ lỏng.
